施旺细胞的原代分离培养与纯化的具体操作步骤是什么?
2026-04-15 15:09阅读:
施旺细胞的原代分离培养与纯化的具体操作步骤是什么?
一、材料准备
新生 SD 大鼠 1~3 天龄
解剖器械、培养皿、离心管、细胞筛(70 μm)
消化液:
0.25% 胰蛋白酶 + 0.1% 胶原酶 IV 1:1 混合
完全培养基:DMEM/F12 + 10% FBS + 1%
双抗
纯化用:
Forskolin(终浓度 2 μM)
Heregulin/HRG(终浓度 10 ng/mL)
多聚赖氨酸(PLL)包被培养瓶
二、原代分离步骤(全程无菌)
1
、取材
75% 酒精消毒大鼠,取双侧坐骨神经。
剔除筋膜、血管,尽量剥去神经外膜。
2、剪碎
将神经移入少量培养基中,剪至 1 mm³
以下。
3、消化
加入混合消化液,37 消化 45~60 min,每 10 min
轻弹一次。
加完全培养基终止消化。
4、吹打、过滤
反复吹打至无肉眼可见组织块。
70 μm 滤网过滤,去除残渣。
5、离心
1000 r/min,5 min,弃上清。
重悬细胞,接种到 PLL 包被的培养瓶。
三、纯化(关键:差速贴壁 +
选择性培养基)
1)第一次差速贴壁(去除成纤维细胞)
接种后 30~60 min,轻轻晃动,吸出未贴壁的上清,转入新的 PLL
瓶。
成纤维细胞贴壁快,已贴在第一个瓶里。
2)第二次差速贴壁
再孵育 30
min,再次收集未贴壁细胞,接种到新瓶。
此时大部分成纤维已被去除。
3)选择性培养基扩增
加入含:
Forskolin 2 μM
HRG 10 ng/mL
的完全培养基。
37、5% CO 培养,每 2~3 天换液。
4)传代时再次纯化
传代时重复 差速贴壁
1~2 次。
一般 P2~P3 即可获得 纯度 >90%
的施旺细胞。
四、鉴定(简单快速)
免疫荧光:S-100β 或 p75NTR
阳性。
形态:长梭形、双极、排列成漩涡状。
五、关键注意点
一定要 新生 1~3
天大鼠,成年鼠很难养。
神经外膜尽量剥干净,否则成纤维极多。
差速贴壁时间不能太长,否则施旺也贴住了。
纯化必须靠 差速贴壁
+ 选择性培养基 一起用。
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