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施旺细胞的原代分离培养与纯化的具体操作步骤是什么?

2026-04-15 15:09阅读:
施旺细胞的原代分离培养与纯化的具体操作步骤是什么?





一、材料准备

新生 SD 大鼠 1~3 天龄

解剖器械、培养皿、离心管、细胞筛(70 μm)

消化液:

0.25% 胰蛋白酶 + 0.1% 胶原酶 IV 1:1 混合

完全培养基:DMEM/F12 + 10% FBS + 1% 双抗

纯化用:

Forskolin(终浓度 2 μM)

Heregulin/HRG(终浓度 10 ng/mL)

多聚赖氨酸(PLL)包被培养瓶

二、原代分离步骤(全程无菌)

1
、取材

75% 酒精消毒大鼠,取双侧坐骨神经。

剔除筋膜、血管,尽量剥去神经外膜。

2、剪碎

将神经移入少量培养基中,剪至 1 mm³ 以下。

3、消化

加入混合消化液,37 消化 45~60 min,每 10 min 轻弹一次。

加完全培养基终止消化。

4、吹打、过滤

反复吹打至无肉眼可见组织块。

70 μm 滤网过滤,去除残渣。

5、离心

1000 r/min,5 min,弃上清。

重悬细胞,接种到 PLL 包被的培养瓶。

三、纯化(关键:差速贴壁 + 选择性培养基)

1)第一次差速贴壁(去除成纤维细胞)

接种后 30~60 min,轻轻晃动,吸出未贴壁的上清,转入新的 PLL 瓶。

成纤维细胞贴壁快,已贴在第一个瓶里。

2)第二次差速贴壁

再孵育 30 min,再次收集未贴壁细胞,接种到新瓶。

此时大部分成纤维已被去除。

3)选择性培养基扩增

加入含:

Forskolin 2 μM

HRG 10 ng/mL

的完全培养基。

37、5% CO 培养,每 2~3 天换液。

4)传代时再次纯化

传代时重复 差速贴壁 1~2 次。

一般 P2~P3 即可获得 纯度 >90% 的施旺细胞。

四、鉴定(简单快速)

免疫荧光:S-100β 或 p75NTR 阳性。

形态:长梭形、双极、排列成漩涡状。

五、关键注意点

一定要 新生 1~3 天大鼠,成年鼠很难养。

神经外膜尽量剥干净,否则成纤维极多。

差速贴壁时间不能太长,否则施旺也贴住了。

纯化必须靠 差速贴壁 + 选择性培养基 一起用。

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